關木通
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__NOTOC__ [http://tcm-toxic.kmu.edu.tw/index.php/辣木科 返回上一頁] {{:模板:基本資料|1=馬兜鈴科Aristolochiaceae |2=馬兜鈴屬|3= 'Aristolochia'|4=關木通|5=''Aristolochia mandshuriensis'' Kom.|6=Guanmutong, Caulis Aristolochiae Manshuriensis|7=馬木通、萬年藤、淮木通,木通馬兜鈴,東北木通}} == '''植物圖片''' == {| border="2" style="border-collapse;" || [[檔案:辣木-仔1.jpg|300px| ]] 辣木籽 || [[檔案:辣木-花0.jpg|300px| ]] 辣木花 || [[檔案:辣木-莖0.JPG|300px| ]] 辣木莖 || |- || [[檔案:辣木-葉1.JPG|300px| ]] 辣木葉 || [[檔案:辣木.jpg|300px| ]] 辣木 || [[檔案:辣木-豆莢0.jpg|300px| ]] 辣木豆莢 |} == '''辣木簡介''' == <font size=3> </font> == '''外觀簡述''' == {| border="2" style="border-collapse;" || <font size=3>'''莖'''</font> ||<font size=3>落葉喬木或灌木,成熟樹株高可達 12 公尺,有廣大典型傘狀樹冠,通常是單一主幹,不分枝,木材材質較柔軟,樹皮淺灰色,幼苗的莖幹粉紅色。地下有肥大粗狀塊根,可以完整的保持水分,所以辣木在年雨量 250~3000公厘的環境裡,都可以生存。</font> |- || <font size=3>'''葉'''</font> ||<font size=3>葉多叢生於枝條先端,3~4 回羽狀複葉,長 20~60 公分;葉軸長 3~6 公分,有 2~6 對針狀分枝,每一針狀分枝有 3~5 片葉;葉軸具有關節,有線形或棍棒狀腺體,第一回羽片 8~10 對;小葉有柄,卵形、倒卵形或長橢圓形,長 1~3 公分,寬 0.6~1.8 公分,先端鈍或銳尖,基部漸狹,紙質,全緣,表面呈有光澤的綠色,背面淡綠色,初時有灰色毛茸,但很快便變為光滑無毛;最末端的葉,通常稍大些。</font> |- || <font size=3>'''花'''</font> ||<font size=3> 花多數,帶蜜香、香如蘭,乳白色,但基部稍帶綠色色澤,呈腋生的直立圓錐花序;花瓣 5 瓣,纖細湯匙狀,基部有黃色的斑駁,花瓣呈反捲狀;花瓣位於最先端的長 1.5 公分;有雄蕊十枚,其中有 5 枚已經退化,為不孕性雄蕊,另 5 枚雄蕊含花藥及花粉,為可孕性;雄蕊及退化雄蕊基部有毛茸;趨向於最大花瓣處,先端彎曲。夏季開花。</font> |- || <font size=3>'''果實'''</font> ||<font size=3>果實為蒴果,長條狀豆莢向下懸垂,莢果表面有 3~5 條縱稜,橫切面呈三角形,長可達 30~50 公分;種子徑約 1 公分,有翅 3 枚。</font> |} == '''產地''' == <font size=3></font> =='''使用情況'''== <font size=3>在部分開發中國家,葉部的水萃取物可用作凝血劑(coagulate)及抗菌[1, 2],種子也有用於外敷治療風濕病(rheumatism)及痛風(gout)[3] </font> =='''活性成份'''== {| border="2" style="border-collapse;" || <font size=3>'''葉'''[4-9]</font> ||<font size=3> *1. Niaziminin *2. Carbamate *3. Isothiocyanate *4. nitrile glycosides *5. pyrrolemarumine 4”-O-α-L-rhamnopyranoside *6. 4’-hydroxyphenylethanamide *7. niazirin (4-(α-L-rhamnopyranosyloxy)phenylacetonitrile) *8. benzyl β-D-glucopyranoside *9. benzyl β-D-xylopyranosyl-(1 -> 6)-β-D-glucopyrano- side *10. kaempferol 3-O-β-D-glucopyranoside *11. quercetin 3-O-β-D-glucopyranoside *12. adenosine *13. L-tryptophan *14. Protease inhibitor *15. Niaziridin *16. Gallic acid (534.4 μg/g) *17. Chlorogenic acid (488.5μg/g) *18. Ellagic acid (189.1μg/g) *19. Ferulic acid (128.2μg/g) *20. Kaempferol (497.6μg/g) *21. Quercetin (807μg/g) *22. Rutin (190 μg/g) </font> |- || <font size=3>'''果實'''[3, 10]</font> ||<font size=3> *1. niazidin *2. 4(α-L-rhanmosyloxy)phenylacetonitrile *3. 4-hydroxyphenylacetonitrile *4. 4-hydroxyphenyl-acetamide </font> |} =='''活性研究'''== <font size=3> *1. 辣木葉水萃取物可提高glutathione (GSH)的含量,並降低malondialdehyde (MDA),其中又以乙酸乙脂的萃取物部分所含的多環芳香類(polyphenolic)化合物含量及抗氧化能力最高。實驗結果也顯示乙酸乙脂萃取物可抑制氫氧根離子所引起的氧化性DNA傷害。果實的乙醇萃取物則可強化還原能力及降低自由基(free radical)氧化能力。而葉子和果實的乙醇萃取物的抗氧化能力遠高於水萃取物。在動物體內給予100 mg/kg的乙醇或水的萃取物均無任何毒性症狀出現[9, 11]。 *2. 經口餵食大鼠辣木葉水萃取物1 mg/g bw以及高脂肪食物,相比對照組(僅餵食高脂肪食物),發現餵食辣木葉的組別,血清,肝及腎中的膽固醇含量分別下降了14.35%,6.40%及11.09%。其中血清膽固醇含量呈現顯著的下降(p<0.001)。同時,也發現血清中白蛋白(albumin)顯著(p<0.05)上升15.22%[12]。 *3. 免疫促進:50%乙醇萃取的辣木葉,經口給予正常小鼠和免疫抑制的小鼠125, 250, 500 mg/kg bw連續15天後,再給予30 mg/kg bw的cyclophosphamide連續三天,然後檢測血液數值,白血球,嗜中性白血球,胸腺及脾臟的重量,巨嗜細胞的吞噬指數(phagocytic activity)在兩種在兩種模式的小鼠均呈現劑量相關的上升[13]。 *4. 免疫抑制:辣木果乙醇萃取物50, 100, 200 mg/kg bw餵食Swiss albino小鼠,結果脾臟重量,血液中的白血球及儲存於脾臟的白血球數量,巨嗜細胞的吞噬能力都呈現劑量相關的下降(p<0.05)。給予48小時候,delayed-type hypersensitivity reaction及抗體濃度也顯著的下降(p<0.01)[14]。 </font> == '''毒性研究''' == *<font size=3 color=green>'''症狀'''</font> <font size=3> **1. 未知,有案例指出病患出現急性肝衰竭現象,但兩人均有肝臟急疾病史[15] </font> *<font size=3 color=green>'''有毒成分'''</font> <font size=3> **1. 4(α-L-rhanmosyloxy)phenylacetonitrile **2. 4-hydroxyphenylacetonitrile **3. 4-hydroxyphenyl-acetamide </font> *<font size=3 color=green>'''中毒劑量'''</font> <font size=3> **1. 雄性Wistar albino小鼠:LD50:1585 mg/kg[16] **2. 鯉魚(Cyprinus carpio):LD50:124.0 mg/ml[17] **3. Sprague-Dawley大鼠:Micronucleus:3000 mg/ml[18] **4. Female Sprague-Dawley大鼠(辣木混合物):oral LD50 > 5000 mg/kg,dermal LD50 > 2000 mg/kg,NOAEL > 2500 mg/kg bw[19]。 </font> *<font size=3 color=green>'''機轉'''</font> <font size=3> **未知 </font> *<font size=3 color=green>'''肝腎毒性'''</font> <font size=3> **1. 辣木根甲醇萃取物,以每週(35, 46, 70 mg/kg)及每日(3.5, 4.6, 7.0 mg/kg)腹腔注射,兩種形式給與小鼠,在46 mg/kg組別中,小鼠血液中的氨基轉氨酶(aminotransferase)及膽固醇量都有顯著的升高;而70 mg/kg組,總膽紅素(total bilirubin),非蛋白氮(non-protein nitrogen),尿素氮(blood urea nitrogen)及血漿蛋白(plasma protein)也都有改變[20]。 **2. 新新鮮辣木葉(樹齡2年),以蒸餾水萃取後,給予小鼠,測試口服及腹腔注射急性毒性,亞慢性毒性。口服部分並未見到任何死亡任何死亡或毒性現象產生,僅有部分小鼠在高劑量初期兩小時時,出現輕微的遲鈍現象,而腹腔注射部分也有同樣的情形,但在2000 mg/kg組死亡率達80%(LD50: 1585 mg/kg)。體重及血液生化數值部分,均無顯著改變,但小鼠進食量有隨著劑量增加而減少有隨著劑量增加而減少[16]。 </font> *<font size=3 color=green>'''血液毒性'''</font> <font size=3> **1. 木根甲醇萃取物,以每週(35, 46, 70 mg/kg)及每日(3.5, 4.6, 7.0 mg/kg)腹腔注射,兩種形式給與小鼠,在7.0 mg/kg組及46和70 mg/kg組中,發現白血球數目顯著上升,凝血時間顯著下降[20]。 **2. 辣木籽水萃取物,餵食鯉魚(Cyprinus carpio)96小時,半數致死濃度(LC50)124.0 mg/ml。在非致死劑量(12.4 mg/ml)下,血液數值血紅素(hemoglobin),血容積比(hematocrit),紅血球(red blood cells),平均血紅蛋白濃度(mean corpuscular hemoglobin concentration)在連續給藥21至35天後顯著下降,白血球(white blood cells),平均紅血球容積(mean corpuscular volume),平均血球血紅素(mean corpuscular hemoglobin)在21至28天後顯著上升。生化數值glucose,AST,ALT及ALP顯著上升,血漿蛋白則為下降[17]。 </font> *<font size=3 color=green>'''基因毒性'''</font> <font size=3> *1. 辣木葉水萃取物給予周邊血液單核細胞(peripheral blood mononuclear cells, PBMC),產生細胞毒性劑量為20 mg/ml。而以1000及3000 mg/ml餵食Sprague-Dawley大鼠,高劑量下,骨髓母紅血球產生出數量顯著的微核(p=0.013)[18]。 *2. 由烘烤過的辣木籽中分離出的活性成份4(α-L-rhanmosyloxy)phenylacetonitrile,4-hydroxyphenylacetonitrile及4-hydroxyphenyl-acetamide,以間隔24小時給予Swiss Webster albino小鼠兩次,在40 mg/kg以上的劑量,導致明顯的微核出現[10]。 *3. 辣辣木籽粉末萃取物,以沙門氏桿菌TA97,TA98,TA100及TA102測試致突變致性,TA97代謝組濃度0.8 μg/μl以上,TA98代謝組0.8μg/μl以及TA100非代謝組0.6 μg/μl以上,均有顯著的突變現象[21]。 </font> =='''毒性分級'''== <font size=3>[http://tcm-toxic.kmu.edu.tw/index.php/%E6%AF%92%E6%80%A7%E5%88%86%E9%A1%9E 級數B]</font> == '''參考文獻''' == <font size=3> 1. Santos AF, Argolo AC, Coelho LC, Paiva PM. Detection of water soluble lectin and antioxidant component from Moringa oleifera seeds. Water Res 2005; 39: 975-980. 2. Eilert U, Wolters B, Nahrstedt A. The antibiotic principle of seeds of Moringa oleifera and Moringa stenopetala. Planta Med 1981; 42: 55-61. 3. Faizi S, Siddiqui BS, Saleem R et al. Isolation and structure elucidation of a novel glycoside niazidin from the pods of Moringa oleifera. Journal of Natural Products 1997; 60: 1317-1321. 4. Murakami A, Kitazono Y, Jiwajinda S et al. Niaziminin, a thiocarbamate from the leaves of Moringa oleifera, holds a strict structural requirement for inhibition of tumor-promoter-induced Epstein-Barr virus activation. Planta Med 1998; 64: 319-323. 5. Sahakitpichan P, Mahidol C, Disadee W et al. Unusual glycosides of pyrrole alkaloid and 4′-hydroxyphenylethanamide from leaves of Moringa oleifera. Phytochemistry 2011; 72: 791-795. 6. Bijina B, Chellappan S, Basheer SM et al. Protease inhibitor from Moringa oleifera leaves: Isolation, purification, and characterization. Process Biochemistry 2011; 46: 2291-2300. 7. Shanker K, Gupta MM, Srivastava SK et al. Determination of bioactive nitrile glycoside(s) in drumstick (Moringa oleifera) by reverse phase HPLC. Food Chemistry 2007; 105: 376-382. 8. CSIR ND. Nitrile glycoside useful as a bioenhancer of drugs and nutrients, process of its isolation from Moringa oleifera. Patent 2005; 6: 588. 9. Verma AR, Vijayakumar M, Mathela CS, Rao CV. In vitro and in vivo antioxidant properties of different fractions of Moringa oleifera leaves. Food Chem Toxicol 2009; 47: 2196-2201. 10. Villasenor IM, Lim-Sylianco CY, Dayrit F. Mutagens from roasted seeds of Moringa oleifera. Mutat Res 1989; 224: 209-212. 11. Luqman S, Srivastava S, Kumar R et al. Experimental Assessment of Moringa oleifera Leaf and Fruit for Its Antistress, Antioxidant, and Scavenging Potential Using In Vitro and In Vivo Assays. Evid Based Complement Alternat Med 2012; 2012: 519084. 12. Ghasi S, Nwobodo E, Ofili JO. Hypocholesterolemic effects of crude extract of leaf of Moringa oleifera Lam in high-fat diet fed wistar rats. J Ethnopharmacol 2000; 69: 21-25. 13. Gupta A, Gautam MK, Singh RK et al. Immunomodulatory effect of Moringa oleifera Lam. extract on cyclophosphamide induced toxicity in mice. Indian J Exp Biol 2010; 48: 1157-1160. 14. Mahajan SG, Mehta AA. Immunosuppressive activity of ethanolic extract of seeds of Moringa oleifera Lam. in experimental immune inflammation. J Ethnopharmacol 2010; 130: 183-186. 15. 林燕明. 服辣木籽急性肝衰竭. In. 蘋果日報 2004. 16. Awodele O, Oreagba IA, Odoma S et al. Toxicological evaluation of the aqueous leaf extract of Moringa oleifera Lam. (Moringaceae). Journal of Ethnopharmacology 2012; 139: 330-336. 17. Kavitha C, Ramesh M, Kumaran SS, Lakshmi SA. Toxicity of Moringa oleifera seed extract on some hematological and biochemical profiles in a freshwater fish, Cyprinus carpio. Experimental and toxicologic pathology 2011. 18. Asare GA, Gyan B, Bugyei K et al. Toxicity potentials of the nutraceutical Moringa oleifera at supra-supplementation levels. Journal of Ethnopharmacology 2012; 139: 265-272. 19. Krishnaraju AV, Sundararaju D, Srinivas P et al. Safety and toxicological evaluation of a novel anti-obesity formulation LI85008F in animals. Toxicol Mech Methods 2010; 20: 59-68. 20. Mazumder UK, Gupta M, Chakrabarti S, Pal D. Evaluation of hematological and hepatorenal functions of methanolic extract of Moringa oleifera Lam. root treated mice. Indian J Exp Biol 1999; 37: 612-614. 21. Rolim LA, Macedo MF, Sisenando HA et al. Genotoxicity evaluation of Moringa oleifera seed extract and lectin. J Food Sci 2011; 76: T53-58. </font> [http://tcm-toxic.kmu.edu.tw/index.php/辣木科 返回上一頁]
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